RNAseq|批量单因素生存分析 + 绘制森林图

简介: RNAseq|批量单因素生存分析 + 绘制森林图

本文首发于“生信补给站”公众号  https://mp.weixin.qq.com/s/3kLClCRiBOLbDbawydVjUg


生存分析作为转录组文章中的VIP,太常见了,那么如何批量得到所有候选基因的单因素结果以及可视化结果呢?

本文将分别使用循环方式 和ezcox进行批量单基因生存分析,以及使用ggplot2 和forestplot绘制单因素生存分析森林图

一 载入R包,数据


仍然使用之前处理过的TCGA的SKCM数据,此外需要读入生存数据和临床数据



library(tidyverse)
library(openxlsx)
library("survival")
library("survminer")
load("RNAseq.SKCM.RData")
#选取部分基因作示例
data.mat <- t(expr[order(apply(expr, 1, mad), decreasing = T)[1:1000],])
#读取生存数据
surv <- read.table("TCGA-SKCM.survival.tsv",sep = "\t" , header = T,
                   stringsAsFactors = FALSE ,
                   check.names = FALSE)
phe <- read.xlsx("cli.xlsx",sheet = 1)


真实项目中,data.mat部分可以是某些通路,功能的基因(免疫,铜死亡,铁死亡,细胞凋亡等)差异分析的基因,WGCNA找到的hub基因,总之可以是各种方法找到的候选基因

二 批量单因素分生存分析


1,使用循环的方式进行分析
首先处理表达数据,注意基因名字的处理tidyverse包非常值的狠狠学


library(tidyverse)
library(openxlsx)
library("survival")
library("survminer")
load("RNAseq.SKCM.RData")
#选取部分基因作示例
data.mat <- t(expr[order(apply(expr, 1, mad), decreasing = T)[1:1000],])
#读取生存数据
surv <- read.table("TCGA-SKCM.survival.tsv",sep = "\t" , header = T,
                   stringsAsFactors = FALSE ,
                   check.names = FALSE)
phe <- read.xlsx("cli.xlsx",sheet = 1)

注:univ_results部分中的内容可以自定义,包括添加更多的信息,调整小数位数等;2,使用 ezcox 一行输出
ezcox是ShixiangWang大佬 开发的R包,一行代码输出所需结果 ,参考使用 ezcox 进行批量 Cox 模型处理 - 知乎 (zhihu.com)


对比两种方式,结果是一致的。

三 绘制森林图


对于单因素的结果,经常出现的可视化方式就是绘制森林图 。可以使用经典的forestplot-R包绘制(封装),或者使用ggplot2绘制(自由设置)。1 ,forestplot包绘制
forestplot绘制的关键就在于构建tabletext信息因为基因太多,随机选择30个基因进行绘制


module_exp <- as.data.frame(data.mat) %>%
  rownames_to_column("sample") %>% 
  inner_join(surv) %>%  #添加生存数据
  select(sample,OS,OS.time,`_PATIENT`,everything()) %>% #将生存列放到前面
  select_all(~str_replace_all(., "-", "_"))  #基因ID不规范会报错,下划线替换-
dim(module_exp)
#指定待分析的基因
module_expr.cox <- module_exp
covariates <- names(module_expr.cox[,5:ncol(module_expr.cox)])
#构建单因素模型
univ_formulas <- sapply(covariates,
function(x) as.formula(paste('Surv(OS.time, OS)~', x)))
univ_models <- lapply( univ_formulas, function(x){coxph(x, data = module_expr.cox)})
# 提取结果
univ_results <- lapply(univ_models,
                       function(x){ 
                         x <- summary(x)
                         p.value<-signif(x$wald["pvalue"], digits=3)
                         wald.test<-signif(x$wald["test"], digits=3)
                         beta<-signif(x$coef[1], digits=3);#coeficient beta
                         HR <-signif(x$coef[2], digits=3);#exp(beta)
                         HR.confint.lower <- signif(x$conf.int[,"lower .95"], 3)
                         HR.confint.upper <- signif(x$conf.int[,"upper .95"], 3)
                         HR <- paste0(HR, " (", 
                                      HR.confint.lower, "-", HR.confint.upper, ")")
                         res<-c(beta, HR, wald.test, p.value)
                         names(res)<-c("beta", "HR (95% CI for HR)", "wald.test", 
"p.value")
                         return(res)
                       })
res <- t(as.data.frame(univ_results, check.names = FALSE))


更多参数设置可以使用 ??forestplot 查看 或者 R-forestplot包| HR结果绘制森林图

2, ggplot2 方式绘制自由度较高,需要对ggplot2有基本的了解,ggplot2|详解八大基本绘图要素


set.seed(1234)
res_2_test <- res_2[sample(nrow(res_2), 30), ]
#构建tabletext
sample <- as.data.frame(res_2_test)
tabletext1<-as.character(sample[,1])
tabletext2<-round(as.numeric(sample[,'HR']),5)
tabletext3<-paste(round(as.numeric(sample[,'HR']),3),round(as.numeric(sample[,'lower_95']),2),sep="(")
tabletext4<-paste(tabletext3,round(as.numeric(sample[,'upper_95']),2),sep="-")
tabletext5<-paste0(tabletext4,sep=")")
tabletext<-cbind(tabletext1,tabletext2,tabletext5)
forestplot(labeltext=tabletext, #文本信息  
           mean = round(sample[,'HR'],3),##HR值
lower = round(sample[,"lower_95"],2),##95%置信区间
upper = round(sample[,"upper_95"],2),#95%置信区间
           boxsize = 0.8,##大小
           graph.pos=4,#图在表中的列位置
           graphwidth = unit(0.4,"npc"),#图在表中的宽度比例
           fn.ci_norm="fpDrawDiamondCI",#box类型选择钻石,可以更改fpDrawNormalCI;fpDrawCircleCI等
col=fpColors(box="steelblue", lines="black", zero = "black"),#颜色设置
           lwd.ci=2,ci.vertices.height = 0.1,ci.vertices=TRUE,#置信区间用线宽、高、型
           zero=1,#zero线横坐标
           lwd.zero=2,#zero线宽
           grid=T,
           lwd.xaxis=2,#X轴线宽
           title="Hazard Ratio",
           xlab="",#X轴标题
           clip=c(-Inf,3),#边界
           colgap = unit(0.5,"cm")   
)



假如部分基因有特定信息,比如是重点的免疫基因,有的是凋亡基因,也可以通过颜色和符号标识出来 (此为示例,并非真实免疫和凋亡基因)。

ggplot(res_2_test, aes(HR, Variable))+  ##定义X轴和Y轴,以类型分类
  geom_point(size=2.5)+  #点的大小
  geom_errorbarh(aes(xmax =upper_95, xmin = lower_95), height = 0.4)+ ##95%置信区间,误差线
  geom_vline(aes(xintercept = 1))+ #以1为分界线
  xlab('HR(95%CI)') + ylab(' ')+  #定义横纵坐标
  theme_bw(base_size = 12)


四 单因素预后显著基因


根据中得到的所有基因的单因素生存分析结果,可以根据阈值(p < 0.05)筛选 预后显著的基因集,



res_2_test$type <- c(rep("immune",5),rep("",10) ,rep("apoptosis",7) ,rep("",8) )
#排序 ,标识type信息
ggplot(res_2_test, aes(HR, reorder(Variable,HR),col=type,shape=type))+  
  geom_point(size=2.5)+  
  geom_errorbarh(aes(xmax =upper_95, xmin = lower_95), height = 0.4)+ 
  geom_vline(aes(xintercept = 1))+ 
  xlab('HR(95%CI)') + ylab(' ')+  
  theme_bw(base_size = 12)+ 
  scale_color_manual(values = c("gray", "steelblue", "red")) #设置颜色

提取显著的基因进行后续的分析,一般是lasso 或者其他机器学习的方法进行筛选,然后构建多因素COX模型(风险模型),最终获取每个样本的risk score ,这样再使用更多的数据集验证其稳定性以及其他方面的分析。

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